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Cytek® cFluor® Human Pan Leukocyte Kit, LNW – 50 Tests

Cytek cFluor Human Pan Leukocyte Kit, LNW ayuda a los investigadores a identificar y enumerar subconjuntos de leucocitos en el descubrimiento y desarrollo de fármacos, y sus otras necesidades de investigación. Esto ha sido diseñado para enumerar completamente el conjunto completo de los principales subconjuntos de leucocitos y para reflejar y ampliar los identificados en un diferencial completo de glóbulos blancos tradicional. El kit se ha optimizado para funcionar con sangre total como un ensayo de lisis sin lavado (LNW) que, junto con un hemograma completo (CBC), permite realizar recuentos precisos de población absoluta de doble plataforma. Además, el kit ha sido diseñado y validado para permitir la identificación secuencial de las poblaciones, lo que proporciona una compuerta fácil y altamente reproducible de los resultados. Este kit también puede servir como un panel troncal que se puede ampliar para identificar aún más cualquier población de interés, así como el estado funcional o de activación/agotamiento de una población en particular.®®

El kit de leucocitos panucocitarios humanos Cytek cFluor, LNW, permite la identificación de más de 20 subpoblaciones de leucocitos, incluidos neutrófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos, células madre hematopoyéticas, subconjuntos de monocitos, subconjuntos de células T, células B y subconjuntos de células NK en sangre total.®®

Dilución probada: 2 μL / prueba

Aplicación: Citometría de flujo

Almacenamiento: 2-8°C y protegido de la luz. (No congelar)

Formulación: Solución tamponada con fosfato, pH 7,2, que contiene 0,09% de azida sódica y 0,2% de BSA.

Hojas de datos: TDS SDS

Tabla 1Composición del kit de leucocitos panucocitarios humanos Cytek cFluor (N/P R7-40007)

DATOS:

Figura 1Estrategia de activación celular para la identificación de subconjuntos de leucocitos utilizando el kit de leucocitos Cytek cFluor Human Pan. Los datos se generaron utilizando sangre entera recolectada en un tubo de EDTA de un donante sano. Las puertas secuenciales de células totales, singletes, glóbulos blancos CD45 (WBC) se utilizan para obtener la población total de leucocitos. Los leucocitos CD66b se seleccionan para identificar neutrófilos (CD16) y eosinófilos (CD16). Los basófilos (CD123HLA-DR) se identifican en poblaciones no CD66b. CD34CD45®++++++mortecino Las células madre hematopoyéticas (HSC) se identifican después de excluir los subconjuntos de granulocitos (Gran) en los leucocitos. Los monocitos (Mono) se seleccionan e identifican por la expresión de CD14 y/o CD16 en la población CD3, CD19, CD7, HLA-DR en población no Gran y no HSC. Los subconjuntos mono se clasifican como mono clásicos (CD14CD16++mortecino), Mono intermedio (CD14CD16), Mono no clásico (CD14++mortecinoCD16). Los linfocitos totales (linfa) se limitan después de excluir los subconjuntos Gran, HSC y Mono. Las células T CD3 y las células B CD19 se identifican en la linfa. Los linfocitos T se dividen a su vez en linfocitos T CD56 similares a NK y linfocitos T CD4 y CD8+ a partir de linfocitos T CD56. A partir de los linfocitos CD19, las células B están subpobladas por la expresión de CD20. Se identifican tres subpoblaciones de células NK por la expresión de CD56++++++hola (NK temprano), CD56CD16 (NK maduro) y CD56CD16 (NK terminal) en la linfa CD7 CD3CD19.++++ 


USO RECOMENDADO

La sangre total recolectada en los tubos sanguíneos K2EDTA, Heparina, ACD y Cyto-Chex BCT se ha probado para validar el rendimiento de este kit. Para conocer los procedimientos de tinción y la estrategia de compuerta, consulte los protocolos y plantillas de preparación de muestras que se enumeran a continuación®

REFERENCIAS:

  1. Clevers H, et al. Ann Rev Immunol. 1988 6, 629 (1988)
  2. Evans RL, et al. Immunol. 78, 544 (1981)
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  4. Cole DK, et al. Cell Mol Immunol. 1, 81 (2004)
  5. Ferrero E, et al. J Immunol. 145, 331 (1990)
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  8. Macardle PJ, et al. Cell Immunol. 168, 59 (1996)
  9. Pieper K, et al. J Allergy Clin Immunol. 131, 959-971 (2013)
  10. Berenson RJ, et al. Blood. 77(8):1717-22. (1991)
  11. Healy L, et al. PNAS. 92(26):12240-12244. (1995)
  12. Loken MR, et al. Cytometry (Citometría). 11, 453 (1990)
  13. Poli A, et al. Immunology (Inmunología). 126, 458 (2009)
  14. Yoon J, et al. J Immunol. 179 (12) 8454-8462 (2007)
  15. Yamada T, et al. Allergy Clin Immunol. 101, 677 (1998)
  16. Uguccioni M, et al. J Clin Invest. 1; 100(5):1137-43 (1997)
  17. Walseng E, et al. J Biol Chem. 283,14717 (2008)

Solo para uso en investigación. No está diseñado para su uso en procedimientos de diagnóstico.

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